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          生物知識(shí)

          細(xì)胞培養(yǎng)基本技術(shù)概述

          作者:admin 來(lái)源:本站 發(fā)布時(shí)間: 2014-07-05 15:28  瀏覽次數(shù):
          購(gòu)買進(jìn)口儀器、試劑和耗材——就在始于2001年的畢特博生物 m.kjhfd.cn

           

          無(wú)血清培養(yǎng)基  網(wǎng)址鏈接http://m.kjhfd.cn/a/gb2312/gongsixinxi/shichanghuodong/2014/0514/5157.html

           

          無(wú)菌操作基本技術(shù)

          1、實(shí)驗(yàn)進(jìn)行前,無(wú)菌室及無(wú)菌操作臺(tái)(laminar flow) 以紫外燈照射30-60 分鐘滅菌,以70 % ethanol 擦拭無(wú)菌操作抬面,并開(kāi)啟無(wú)菌操作臺(tái)風(fēng)扇運(yùn)轉(zhuǎn)10 分鐘后,才開(kāi)始實(shí)驗(yàn)操作。每次操作只處理一株細(xì)胞株,且即使培養(yǎng)基相同亦不共享培養(yǎng)基,以避免失誤混淆或細(xì)胞間污染。實(shí)驗(yàn)完畢后,將實(shí)驗(yàn)物品帶出工作臺(tái),以70 % ethanol 擦拭無(wú)菌操作抬面。操作間隔應(yīng)讓無(wú)菌操作臺(tái)運(yùn)轉(zhuǎn)10 分鐘以上后,再進(jìn)行下一個(gè)細(xì)胞株之操作。

          2、無(wú)菌操作工作區(qū)域應(yīng)保持清潔及寬敞,必要物品,例如試管架、吸管吸取器或吸管盒等可以暫時(shí)放置,其它實(shí)驗(yàn)用品用完即應(yīng)移出,以利于氣流之流通。實(shí)驗(yàn)用品以70 % ethanol 擦拭后才帶入無(wú)菌操作臺(tái)內(nèi)。實(shí)驗(yàn)操作應(yīng)在抬面之中央無(wú)菌區(qū)域,勿在邊緣之非無(wú)菌區(qū)域操作。

          3、小心取用無(wú)菌之實(shí)驗(yàn)物品,避免造成污染。勿碰觸吸管尖頭部或是容器瓶口,亦不要在打開(kāi)之容器正上方操作實(shí)驗(yàn)。容器打開(kāi)后,以手夾住瓶蓋并握住瓶身,傾斜約45° 角取用,盡量勿將瓶蓋蓋口朝上放置桌面。

          4、工作人員應(yīng)注意自身之安全,須穿戴實(shí)驗(yàn)衣及手套后才進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。對(duì)于來(lái)自人類或是病毒感染之細(xì)胞株應(yīng)特別小心操作,并選擇適當(dāng)?shù)燃?jí)之無(wú)菌操作臺(tái)(至少Class II)。操作過(guò)程中,應(yīng)避免引起aerosol 之產(chǎn)生,小心毒性藥品,例如DMSO 及TPA 等,并避免尖銳針頭之傷害等。

          5、定期檢測(cè)下列項(xiàng)目:

          5.1. CO2 鋼瓶之CO2 壓力。
          5.2. CO2培養(yǎng)箱之CO2 濃度、溫度、及水盤是否有污染(水盤的水用無(wú)菌水,每周更換)。
          5.3. 無(wú)菌操作臺(tái)內(nèi)之a(chǎn)irflow 壓力,定期更換紫外線燈管及HEPA 過(guò)濾膜,預(yù)濾網(wǎng)(300 小時(shí)/預(yù)濾網(wǎng),3000 小時(shí)/HEPA)。

          6、水槽可添加消毒劑(Zephrin 1:750),定期更換水槽的水。

          培養(yǎng)基

          1、液體培養(yǎng)基貯存于4 ℃ 冰箱,避免光照,實(shí)驗(yàn)進(jìn)行前放在37℃水槽中溫?zé)帷?/p>

          2、液體培養(yǎng)基(加血清) 存放期為六個(gè)月,期間glutamine 可能會(huì)分解,若細(xì)胞生長(zhǎng)不佳,可以再添加適量glutamine。

          3、粉末培養(yǎng)基配制(以1 升為例):

          3.1. 細(xì)胞培養(yǎng)基通常須添加10 % 血清,因此粉末培養(yǎng)基之配制體積為900 ml,pH 為7.2 - 7.4。NaHCO3 為另外添加,若將NaHCO3 粉末直接加入液體培養(yǎng)基中會(huì)造成pH 之誤差,或局部過(guò)堿。因此粉末培養(yǎng)基及NaHCO3 粉末應(yīng)分別溶解后才混合,然后用CO2氣體調(diào)整pH,而非用強(qiáng)酸(HCl)或強(qiáng)堿(NaOH),因?yàn)槁入x子對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)可能有影響,且貯存時(shí)培養(yǎng)基的pH 易發(fā)生改變。

          3.2. 材料:

          3.2.1. 純水(milli-Q 水或二次至三次蒸餾水,水品質(zhì)非常重要)
          3.2.2. 粉末培養(yǎng)基
          3.2.3. NaHCO3 (Sigma S-4019)
          3.2.4. 電磁攪拌器
          3.2.5. 無(wú)菌血清瓶
          3.2.6. 0.1 或0.2 mm無(wú)菌過(guò)濾膜
          3.2.7. pH meter
          3.2.8. 真空幫浦
          3.2.9. CO2 氣體

          3.3. 步驟:

          3.3.1. 取粉末培養(yǎng)基溶于700 ml milli-Q 水中,攪拌使其溶解。
          3.3.2. 稱取適量之NaHCO3 粉末(數(shù)量依培養(yǎng)基種類而異,表一)溶于200ml milli-Q 水中,攪拌使其溶解,然后通入CO2 氣體至飽和,約3-5 分鐘。
          3.3.3. 將溶解且含飽和CO2 之NaHCO3 溶液加入溶解之液體培養(yǎng)基中混合。混后溶液之pH 應(yīng)為7.2-7.4,除非pH 值偏差太大,否則不需用酸堿再調(diào)整之。若為太堿,可再通入CO2氣體調(diào)整pH。培養(yǎng)基以真空幫浦通過(guò)過(guò)濾膜時(shí),pH 會(huì)升高0.1-0.2。
          3.3.4. 以0.1 或0.2 mm 無(wú)菌過(guò)濾膜過(guò)濾滅菌,同時(shí)分裝至無(wú)菌容器中,標(biāo)示培養(yǎng)基種類、日期、瓶號(hào)等,貯存于4 ℃。(血清亦可加入培養(yǎng)基中一起過(guò)濾) 。
          3.3.5. 配制之培養(yǎng)基配制須作生長(zhǎng)試驗(yàn)與污染測(cè)試。

          4. 配制培養(yǎng)基之生長(zhǎng)測(cè)試

          4.1. 材料:

          4.1.1. MDCK cell (ATCC CCL-34 或CCRC 60004)
          4.1.2. 6-well TC plate (or 35 mm TC dish)
          4.1.3. methanol
          4.1.4. glacial acetic acid
          4.1.5. 10 % Giemsa solution (GibcoBRL 10092-013)

          4.2. 步驟:

          4.2.1. 以待測(cè)試培養(yǎng)基培養(yǎng)MDCK cell,接種MDCK 細(xì)胞于6-well plate (或35mm TC dish) 中,每個(gè)well 接種1 ×102 活細(xì)胞,同時(shí)作對(duì)照組實(shí)驗(yàn)。
          4.2.2. 接種5~7 天后,在100 倍倒立顯微鏡作觀察細(xì)胞群落之生長(zhǎng),待細(xì)胞群落大到可以肉眼觀察,而群落間不互相接觸時(shí)即可。
          4.2.3. 去除培養(yǎng)基,加入1 ml Carnoy’s 固定液(甲醇:冰醋酸﹦ 3:1),室溫下靜置10 min。
          4.2.4. 去除固定液,水洗二次。
          4.2.5. 加入1 ml 10 % Giemsa solution,,室溫下靜置染色2-3 min。
          4.2.6. 去除染液,水洗二次。
          4.2.7. 以肉眼計(jì)數(shù)群落數(shù),并比較之,若新配制或新批號(hào)的培養(yǎng)基對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)不佳,則丟棄之。

          細(xì)胞傳代培養(yǎng)

          1、細(xì)胞生長(zhǎng)至高密度時(shí),即須分殖至新的培養(yǎng)瓶中,一般稀釋比例為1:3 至1:6,依細(xì)胞種類而異。

          2、材料:

          2.1. 無(wú)菌磷酸生理緩沖液(Dulbecco’s phosphate-buffered saline, Ca++/Mg++ free, D-PBS, GibcoBRL 21600-010)

          2.2. trypsin-EDTA solution (0.05% trypsin-0.53mM EDTA-4Na, GibcoBRL 25300-062):以10 ml 分裝于15 ml 無(wú)菌離心管中,保存于–20 ℃,使用前放在37 ℃ 水槽回溫。

          2.3. 新鮮培養(yǎng)基

          2.4. 無(wú)菌吸管/離心管/培養(yǎng)瓶

          3、 步驟:

          3.1. 附著型胞(adherent cell)

          3.1.1. 吸掉舊培養(yǎng)液。

          3.1.2. 用D-PBS 洗滌細(xì)胞一至二次。

          3.1.3. 加入trypsin-EDTA 溶液(1ml/25cm2, 2ml/75cm2),37 oC 作用數(shù)分鐘,于倒立顯微鏡下觀察,當(dāng)細(xì)胞將要分離而呈現(xiàn)圓粒狀時(shí),吸掉trypsin-EDTA 溶液。(若不移去trypsin-EDTA,則在trypsin-EDTA 作用后,加入適量含血清之新鮮培養(yǎng)基終止trypsin 作用,離心后再吸掉上清液。)

          3.1.4. 輕拍培養(yǎng)瓶使細(xì)胞自瓶壁脫落,加入適量之新鮮培養(yǎng)基,以吸管上下吸放數(shù)次以打散細(xì)胞團(tuán)塊,混和均勻后,依稀釋比例轉(zhuǎn)移至新的培養(yǎng)瓶中,以正常培養(yǎng)條件培養(yǎng)。

          3.2. 懸浮型細(xì)胞(suspension cell)

          3.2.1. 吸出細(xì)胞培養(yǎng)液,放入離心管中,離心1000 rpm 5 分鐘。

          3.2.2. 吸掉上清液,加入適量之新鮮培養(yǎng)基,混和均勻后,依稀釋比例轉(zhuǎn)移至新的培養(yǎng)瓶中,以正常培養(yǎng)條件培養(yǎng)。

          3.3. 融合瘤(hybridoma)

          3.3.1. 有些hybridoma cell 需培養(yǎng)三天以上才會(huì)產(chǎn)生抗體,若是更換培養(yǎng)基,則可能會(huì)失去抗體。因此繼代培養(yǎng)不需離心后更換培養(yǎng)基,直接添加新鮮培養(yǎng)基 稀釋細(xì)胞濃度即可。若體積太大,可傾斜放置,或分殖至新培養(yǎng)瓶中。

          收到細(xì)胞的處理方式

          細(xì)胞活化

          1、收到細(xì)胞株包裹時(shí), 請(qǐng)檢查細(xì)胞株冷凍管是否有解凍情形, 若有請(qǐng)立即通知。細(xì)胞株請(qǐng)盡速開(kāi)始培養(yǎng), 或立即冷凍保存(置于–70℃,隔夜后,移到liq N2)。

          2、冷凍細(xì)胞解凍程序

          2.1. 依據(jù)細(xì)胞株數(shù)據(jù)單指定之基礎(chǔ)培養(yǎng)基種類、血清種類和其它指定之成份和比例, 制備培養(yǎng)基。絕大多數(shù)之細(xì)胞均無(wú)法立即適應(yīng)不同之基礎(chǔ)培養(yǎng)基或不同之血清種類, 若因?qū)嶒?yàn)需要, 必須有所不同時(shí), 務(wù)必以緩慢比例漸次改變培養(yǎng)基組成, 確定細(xì)胞適應(yīng)后, 方進(jìn)行所需之實(shí)驗(yàn)。

          2.2. FBS (fetal bovine serum, 胚牛血清), CS (calf serum, 小牛血清)和HS (horse serum, 馬血清),對(duì)細(xì)胞而言差異極大,請(qǐng)務(wù)必依據(jù)細(xì)胞株資料單指定之血清種類培養(yǎng)之。

          2.3. 將培養(yǎng)基置于37 ℃水槽中回溫, 回溫后噴以70 % 酒精并擦拭之, 移入無(wú)菌操作臺(tái)內(nèi)。取出冷凍管, 立即放入37 ℃ 水槽中快速解凍, 水面高度不可接近或高過(guò)冷凍管之蓋沿, 否則易發(fā)生污染。輕搖冷凍管使其在1 分鐘內(nèi)全部融化后, 以70 % ethanol 擦拭冷凍管外部, 移入無(wú)菌操作臺(tái)內(nèi)。

          2.4. 依據(jù)細(xì)胞種類和濃度,于無(wú)菌操作臺(tái)內(nèi)取10 ml 培養(yǎng)基加至T25 或T75 flask 中。取出已解凍之細(xì)胞懸浮液,緩緩加入T25 或T75 flask 內(nèi)之培養(yǎng)基, 混合均勻,放入37 ℃,5 % CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。

          2.5. 對(duì)絕大多數(shù)細(xì)胞而言,1 % 以下之冷凍保護(hù)劑DMSO,不會(huì)對(duì)細(xì)胞之貼附或活化有不良影響,不需立刻由解凍細(xì)胞中去除, 待第二天確定細(xì)胞生長(zhǎng)或貼附良好后再去除即可。惟對(duì)極少數(shù)因?qū)MSO 敏感或會(huì)造成細(xì)胞分化之細(xì)胞,需 立即去除DMSO 者, 則可將解凍后之細(xì)胞懸浮液放入5 - 10 ml 培養(yǎng)基中,離心300 xg (約1000 rpm),5 分鐘,小心移去上清液,加入適量新鮮培養(yǎng)基,將細(xì)胞均勻混合后, 轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)瓶中, 再放入37 ℃, 5 % CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。

          收到T25 flask 細(xì)胞時(shí), 處理方式為

          1、由于寄送過(guò)程中,為避免起泡造成細(xì)胞脫落死亡,T25 flask 均加滿培養(yǎng)基。請(qǐng)檢查flask 外觀,并于顯微鏡下觀察細(xì)胞生長(zhǎng)狀況和有無(wú)污染現(xiàn)象,若有任何問(wèn)題, 不要打開(kāi)蓋子,請(qǐng)立即通知細(xì)胞實(shí)驗(yàn)室。

          2、將原封之T25 flask 靜置于37 ℃, 5 % CO2 培養(yǎng)箱中,使細(xì)胞回溫至37 ℃, 并讓運(yùn)送過(guò)程中少數(shù)脫落的細(xì)胞可再附著生長(zhǎng)。隔天后,于無(wú)菌操作箱內(nèi)取出flask 內(nèi)之培養(yǎng)基,(取出之培養(yǎng)基可以再使用),僅留約5-10ml 培養(yǎng)基于flask 內(nèi),依一般培養(yǎng)方式再將細(xì)胞置入培養(yǎng)箱中,或細(xì)胞已長(zhǎng)滿盤, 則將細(xì)胞做傳代培養(yǎng)。

           

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